鸡病毒性肠炎病毒(DEV)酶联免疫分析试剂盒使用介绍

本试剂盒仅供研究使用。

96T

使用目的：

本试剂盒用于测定鸡血清、血浆及相关液体样本中鸡病毒性肠炎病毒(DEV)表达。

实验原理

本试剂盒应用双抗体夹心法测定标本中鸡病毒性肠炎病毒(DEV)表达。用纯化的鸡病毒性肠炎病毒(DEV)抗体包被微孔板，制成固相体，可与样品中病毒性肠炎病毒(DEV)相结合，经洗涤除去未结合的抗原和其他成分后再与 HRP 标记的鸡病毒性肠炎病毒(DEV)抗体结合，形成抗体-抗原-酶标抗体复合物，经过彻底洗涤后加底物 TMB 显色。TMB 在 HRP 酶的催化下转化成蓝色，并在酸的作用下转化成*终的黄色。用酶标仪在 450nm 波长下测定吸光度（OD 值），与CUTOFF值相比较，从而判定标本中鸡病毒性肠炎病毒(DEV)的存在与否。

试剂盒组成

标本要求

1．标本采集后尽早进行提取，提取按相关文献进行，提取后应尽快进行实验。若不能

马上进行试验，可将标本放于-20℃保存，但应避免反复冻融

2．不能检测含NaN3的样品，因NaN3抑制辣根过氧化物酶的（HRP）活性。

操作步骤

1. 编号：将样品对应微孔按序编号，每板应设阴性对照2孔、阳性对照2孔、空白对照1

孔（空白对照孔不加样品及酶标试剂，其余各步操作相同）

2. 加样：分别在阴、阳性对照孔中加入阴性对照、阳性对照 50µl。然后在待测样品孔先

加样品稀释液 40µl，然后再加待测样品 10µl。加样将样品加于酶标板孔底部，尽量不触及孔壁，轻轻晃动混匀，

3. 温育：用封板膜封板后置37℃温育30分钟。

4. 配液：将30倍浓缩洗涤液用蒸馏水30倍稀释后备用

5. 洗涤：小心揭掉封板膜，弃去液体，甩干，每孔加满洗涤液，静置 30 秒后弃去，如此

重复5次，拍干。

6. 加酶：每孔加入酶标试剂50µl，空白孔除外。

7. 温育：操作同3。

8. 洗涤：操作同5。

9. 显色：每孔先加入显色剂A50µl，再加入显色剂B50µl，轻轻震荡混匀，37℃避光显色

15分钟.

10. 终止：每孔加终止液50µl，终止反应（此时蓝色立转黄色）。

11. 测定：以空白空调零，450nm波长依序测量各孔的吸光度（OD 值）。 测定应在加终止液后15分钟以内进行。

操作程序总结：

试验有效性：阳性对照孔平均值≥1.00; 阴性对照平均值≤0.10

临界值（CUT OFF）计算：临界值=阴性对照孔平均值+0.15

阴性判定：样品OD 值< 临界值（CUT OFF）者为鸡病毒性肠炎病毒(DEV)阴性阳性判定：样品OD 值≥ 临界值（CUT OFF）者为鸡病毒性肠炎病毒(DEV)阳性

。

注意事项

1．操作严格按照说明书进行，本试剂不同批号组分不得混用。

2．试剂盒从冷藏环境中取出应在室温平衡 15-30 分钟后方可使用，酶标包被板开封后如未

用完，板条应装入密封袋中保存。

3．浓洗涤液可能会有结晶析出，稀释时可在水浴中加温助溶，洗涤时不影响结果。

4．封板膜只限一次性使用，以避免交叉污染。